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Product Center品牌 | 其他品牌 | 供貨周期 | 現貨 |
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應用領域 | 食品,化工,生物產業,農業,製藥 |
Sgel限製性內(nei) 切酶
產(chan) 品貨號:F1501S
儲(chu) 存條件:-20℃
SgeI 可識別與(yu) 切割含有 5-mC 位點的 DNA 靶標序列,一條鏈或雙鏈甲基化均可被識別。
組分 | 規格 |
LabFD™ Sgel | 50ul |
10×LabFD™ Buffer | 1ml |
10×LabFD™ Color Buffer | 1ml |
產(chan) 品簡介
LabFD™快速內(nei) 切酶是一係列經過基因工程重組、能夠在 5~15 分鍾內(nei) 精確完成 DNA 切割的高保真限製性內(nei) 切酶,適用於(yu) 質粒DNA、PCR 產(chan) 物或基因組DNA 等的快速酶切。LabFD™快速內(nei) 切酶具有如下特點:5~15 分鍾內(nei) 即可完成酶切;共用一種酶切Buffer,大大簡化酶切反應體(ti) 係;良好的酶活冗餘(yu) 度, 輕鬆應對底物過量或困難模板酶切。此外,LABLEAD去磷酸化、連接試劑在 LabFD™酶切 Buffer 中具有100%活性,支持一管化反應,提升“酶切-修飾-連接"的體(ti) 驗。
酶活定義(yi)
在 1×SgeI Buffer 條件下,1μg pUC19-SgeI DNA (Dcm+) 在50μl 反應體(ti) 係中37℃孵育1 h,不斷增加酶量,直至酶切產(chan) 物DNA帶型不隨著酶量的增加而發生變化,此時酶量定義(yi) 為(wei) 1 U。
質量控製
核酸內(nei) 切酶殘留檢測
將 3U Sgel 與(yu) 超螺旋質粒 DNA 在 37℃溫育 4 h,通過DNA電泳檢測質粒無變化。
核酸外切酶殘留檢測
將 5U Sgel 與(yu) 雙鏈 DNA 底物在 37℃溫育 1 h,通過 DNA 電泳檢測雙鏈DNA 底物無變化。
注意事項
1. 底物至少需要 2 個(ge) SgeI 識別序列才能有效酶切。
2. 甲基化 DNA wanquan酶切取決(jue) 於(yu) SgeI 的識別位點的數量,另外由於(yu) 識別位點酶切產(chan) 生的DNA產(chan) 物會(hui) 促進SgeI
的非特異性酶切,因此建議酶切時優(you) 化SgeI酶量用於(yu) 酶切反應。
使用方法
1. DNA 酶切流程
① 在冰上按如下建議的加樣順序配製反應體(ti) 係:
質粒 DNA | PCR 產(chan) 物 | 基因組 DNA | |
ddH2O | 15ul | 16ul | 30ul |
10×LabFD™ Buffer 或 10×LabFD™ Color Buffer | 2ul | 3ula | 5ul |
底物 DNA | 2ul(up to 1ug) | 10ul(~0.2ug) | 10ul(5ug) |
LabFD™ SgeI | 1ul | 1ul | 5ul |
Total | 20ul | 30ul | 50ul |
注:反應體(ti) 係可以按比例放大或縮小。反應時間不建議超過 1 h。
② 輕柔吸打或輕彈管壁以混勻(切勿渦旋),然後瞬時離心以收集掛壁液滴;
③ 37℃溫育1 h;
④ 80℃溫育 20 min即可使酶失活,停止反應(可選)。
2.雙酶切或多酶切
每種快速內(nei) 切酶的用量為(wei) 1ul,並根據需要適當擴大反應體(ti) 係;
所有快速內(nei) 切酶的體(ti) 積總和不得超過總反應體(ti) 係的 1/10;
如果所用的幾種快速內(nei) 切酶的最適反應溫度不同,應先以最適溫度低的酶開始酶切,再添加最適溫度較高的酶,在其最適反應溫度下進行酶切反應。
3.適用於(yu) 質粒的擴大反應體(ti) 係
注:如果總反應體(ti) 係大於(yu) 20ul,應適當增加溫育時間,盡量使用水浴、金屬浴或沙浴。
DNA | 1ug | 2ug | 3ug | 4ug | 5ug |
LabFDTM Sgel | 1ul | 2ul | 3ul | 4ul | 5ul |
10×LabFD™ Buffer 或 10×LabFD™ Color Buffer | 2ul | 2ul | 3ul | 4ul | 5ul |
Total | 20ul | 20ul | 30ul | 40ul | 50ul |
甲基化修飾影響
Dam | Dcm | CpG | EcoKI | EcoBI
|
無影響 | 總是切割被 Dcm甲基轉移酶甲基化的DNA | 切割與(yu) CpG 甲基化序列重疊的靶點 | 無影響 | 無影響 |